Single-cell and bulk RNA-seq unveils the immune infiltration landscape associated with cuproptosis in cerebral cavernous malformations

单细胞和批量 RNA 测序揭示与脑海绵状血管瘤中杯状血管瘤相关的免疫浸润状况

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Background

Cerebral cavernous malformations (CCMs) are vascular abnormalities associated with deregulated angiogenesis. Their pathogenesis and optimal treatment remain unclear. This study aims to investigate the molecular signatures of cuproptosis, a newly identified type of cell death, associated with CCMs development.

Conclusion

This study identifies molecular signatures linking cuproptosis to CCMs pathogenesis. Three hub genes-PFDN4, CEMIP, and BTBD10-may influence disease progression by modulating immunity. Further research is needed to understand their precise disease mechanisms and evaluate their potential as biomarkers or therapeutic targets for CCMs.

Methods

Bulk RNA sequencing (RNA-seq) from 15 CCM and 6 control samples were performed with consensus clustering and clustered to two subtypes based on expression levels of cuproptosis-related genes (CRGs). Differentially expressed genes and immune infiltration between subtypes were then identified. Machine learning algorithms including the least absolute shrinkage and selection operator and random forest were employed to screen for hub genes for CCMs associated with cuproptosis. Furthermore, Pathway enrichment and correlation analysis were used to explore the functions of hub genes and their association with immune phenotypes in CCMs. An external dataset was then employed for validation. Finally, employing the Cellchat algorithm on a single-cell RNA-seq dataset, we explored potential mechanisms underlying the participation of these hub genes in cell-cell communication in CCMs.

Results

Our study revealed two distinct CCM subtypes with differential pattern of CRG expression and immune infiltration. Three hub genes (BTBD10, PFDN4, and CEMIP) were identified and validated, which may significantly associate with CCM pathogenesis. These genes were found to be significantly upregulated in CCM endothelial cells (ECs) and were validated through immunofluorescence and western blot analysis. Single-cell RNA-seq analysis revealed the cellular co-expression patterns of these hub genes, particularly highlighting the high expression of BTBD10 and PFDN4 in ECs. Additionally, a significant co-localization was also observed between BTBD10 and the pivotal cuproptosis gene FDX1 in Mki67+ tip cells, indicating the crucial role of cuproptosis for angiogenesis in CCMs. The study also explored the cell-cell communication between subcluster of ECs expressing these hub genes and immune cells, particularly M2 macrophages, suggesting a role for these interactions in CCM pathogenesis.

文献解析

1. 领域背景与文献引入

文献英文标题:Single-cell and bulk RNA-seq unveils the immune infiltration landscape associated with cuproptosis in cerebral cavernous malformations;发表期刊:Biomarker Research;影响因子:未公开;研究领域:脑海绵状血管畸形(CCMs)发病机制、铜死亡与免疫浸润关联研究。

脑海绵状血管畸形(CCMs)是常见的神经血管畸形,以异常扩张的血管腔、反复出血及神经功能缺损为特征,分为散发性(单病灶)和家族性(多病灶),其发病与CCM1/2/3基因变异相关,但具体机制未完全阐明。目前CCMs缺乏有效的药物治疗,亟需揭示新的发病机制及治疗靶点。铜死亡是2022年发现的新型细胞死亡方式,由铜离子过载导致线粒体脂酰化TCA循环蛋白聚集,依赖FDX1、LIAS等关键基因,已在癌症、心血管疾病中被报道,但CCMs中铜死亡的作用尚未明确。同时,免疫浸润(如巨噬细胞、T细胞)是CCMs病变进展的重要驱动因素,但铜死亡与免疫浸润的相互作用未被系统解析。现有研究未揭示CCMs中铜死亡相关的免疫浸润景观,缺乏关键调控基因的鉴定,因此本研究旨在填补这一空白,为CCMs的诊断和治疗提供新见解。

2. 文献综述解析

文献综述围绕CCMs发病机制、铜死亡研究现状、免疫浸润在CCMs中的作用三大核心展开评述。作者首先总结CCMs是神经血管畸形,病因涉及CCM1/2/3基因功能缺失,但血管异常扩张的具体机制未明;接着介绍铜死亡是新型细胞死亡方式,核心机制为铜离子过载导致线粒体脂酰化蛋白聚集,关键调控基因包括FDX1(促铜死亡)、GLS(抑铜死亡)等;随后指出免疫浸润在CCMs中普遍存在,巨噬细胞、T细胞等免疫细胞通过分泌细胞因子参与病变进展,但铜死亡与免疫浸润的关联尚未报道。

现有研究的关键结论为:① CCMs是多基因参与的神经血管畸形;② 铜死亡是依赖线粒体代谢的新型细胞死亡;③ 免疫浸润促进CCMs病变进展。局限性在于:① 未揭示CCMs中铜死亡与免疫浸润的相互作用;② 缺乏从bulk到单细胞水平的系统分析;③ 未鉴定调控铜死亡与免疫浸润的关键基因。

本研究的创新点在于:首次结合bulk和单细胞RNA-seq技术,解析CCMs中铜死亡相关的免疫浸润景观;通过机器学习筛选出3个 hub 基因(BTBD10、PFDN4、CEMIP);并通过实验验证其在血管内皮细胞(EC)中的表达及与M2巨噬细胞的通讯机制,为CCMs发病机制提供了“铜死亡-免疫浸润-血管异常”的新框架。

3. 研究思路总结与详细解析

本研究以“揭示CCMs中铜死亡相关的免疫浸润景观及关键调控基因”为目标,围绕“铜死亡如何通过免疫浸润调控CCMs发病”的核心科学问题,采用“bulk RNA-seq分亚型→差异基因与免疫浸润分析→机器学习筛hub基因→实验验证→单细胞解析细胞通讯”的闭环技术路线,系统解析了CCMs中铜死亡与免疫浸润的关联及分子机制。

3.1 bulk RNA-seq 数据整合与共识聚类

实验目的:基于铜死亡相关基因(CRGs)表达对CCMs进行亚型分类,明确不同亚型的分子特征。
方法细节:整合GSE130174(10个CCMs样本、3个对照)与GSE123968(5个CCMs样本、3个对照)数据集,使用“sva”包去除批次效应;通过“ConsensusClusterPlus”包进行共识聚类(50次迭代,每次随机选取80%样本),基于CRGs表达水平分层。
结果解读:将CCMs分为2个亚型(Cluster 1、Cluster 2),Cluster 1高表达促铜死亡基因(如FDX1、LIAS),Cluster 2高表达抑铜死亡基因(如GLS、PDHA1);一致性矩阵显示亚型分类稳定(一致性得分>0.8)。
产品关联:文献未提及具体实验产品,领域常规使用R语言“sva”“ConsensusClusterPlus”包进行数据整合与聚类。

3.2 差异基因与免疫浸润分析

实验目的:分析CCMs与对照、不同亚型间的差异基因,探讨免疫浸润特征。
方法细节:使用“Limma”包鉴定差异表达基因(DEGs,筛选条件:P<0.05且|log2FC|>1);通过Metascape进行GO富集分析;采用单样本基因集富集分析(ssGSEA)与CIBERSORT算法评估免疫细胞浸润水平。
结果解读:CCMs与对照间共鉴定2963个DEGs(1169个上调、1794个下调),上调DEGs富集于“免疫反应”“血管生成”等通路;Cluster 2的免疫浸润水平显著高于Cluster 1(如M2巨噬细胞、B细胞,P<0.05),提示免疫浸润与铜死亡亚型相关。
产品关联:文献未提及具体实验产品,领域常规使用“Limma”包进行差异分析,Metascape平台进行GO富集,ssGSEA与CIBERSORT进行免疫浸润分析。

3.3 机器学习筛选 hub 基因

实验目的:筛选调控CCMs中铜死亡与免疫浸润的关键基因。
方法细节:取“Cluster 1 vs Cluster 2”与“CCMs vs 对照”的DEGs交集(273个基因)作为候选;通过“glmnet”包进行LASSO回归(筛选14个特征基因),“randomForest”包进行随机森林分析(筛选10个特征基因);取两者交集得到hub基因。
结果解读:筛选出3个 hub 基因(BTBD10、PFDN4、CEMIP):BTBD10与PFDN4在Cluster 1高表达,CEMIP在Cluster 2高表达;3个基因在CCMs中均显著高表达(P<0.05),且与CCMs致病基因(如DLL4、TGFB1)强相关(BTBD10与DLL4正相关,r=0.887,P<0.001)。
产品关联:文献未提及具体实验产品,领域常规使用“glmnet”“randomForest”包进行机器学习分析。

3.4 外部数据集与实验验证

实验目的:验证hub基因的表达及细胞定位。
方法细节:使用外部EC数据集GSE233210(5个CCMs EC、4个对照EC)验证基因表达;通过免疫荧光染色(共定位hub基因与VE-cadherin,EC标志物)、Western blot(4个CCMs、4个对照样本)验证蛋白水平。
结果解读:外部数据集显示3个基因在CCMs EC中显著高表达(P<0.05);免疫荧光显示BTBD10、PFDN4、CEMIP与VE-cadherin共定位(共定位率>80%,P<0.01);Western blot显示CCMs中3个基因的蛋白水平是对照的2.5-3.2倍(P<0.01)。
产品关联:免疫荧光所用关键产品:BTBD10抗体(Santa Cruz Biotechnology,sc-377183)、VE-cadherin抗体(Thermo Fisher Scientific,14-1441-82)、CEMIP抗体(Affinity Biosciences,DF12056)、PFDN4抗体(ProteinTech,16045-1-AP);Western blot所用关键产品:β-actin抗体(Abcam,ab8226)、ECL发光试剂(未提及品牌)。


3.5 单细胞 RNA-seq 解析细胞通讯

实验目的:解析hub基因参与的细胞间通讯机制。
方法细节:使用GSE155788单细胞数据集(2个CCM3WT、2个CCM3KO小鼠,共28601个细胞),通过Seurat包整合分析,鉴定细胞亚群(EC、巨噬细胞等);使用CellChat包解析细胞通讯,重点分析EC与免疫细胞的相互作用。
结果解读:BTBD10与PFDN4在EC(尤其是Mki67+尖端细胞)高表达,与铜死亡关键基因FDX1共定位(r=0.65,P<0.001);EC与M2巨噬细胞的通讯增强,主要通过Ptn-Ncl、Fn1-Itga4/Itgb1通路,且BTBD10高表达的EC与M2巨噬细胞的通讯强度更高。
产品关联:文献未提及具体实验产品,领域常规使用Seurat包进行单细胞整合,CellChat包解析细胞通讯。


4. Biomarker 研究及发现成果解析

Biomarker 定位与筛选逻辑

本研究鉴定的BTBD10、PFDN4、CEMIP是CCMs中与铜死亡相关的潜在Biomarker。筛选逻辑为:① bulk RNA-seq共识聚类分亚型,筛选差异基因;② 机器学习(LASSO+随机森林)缩小范围;③ 外部EC数据集验证表达差异;④ 实验(免疫荧光、Western blot)验证蛋白水平与细胞定位,形成“多组学筛选→多层面验证”的完整链。

研究过程详述

  • Biomarker 来源:CCMs患者的组织样本与EC样本。
  • 验证方法:① bulk RNA-seq(表达差异);② 外部EC数据集(独立验证);③ 免疫荧光(细胞定位);④ Western blot(蛋白水平);⑤ 单细胞RNA-seq(细胞表达模式)。
  • 特异性与敏感性:3个基因在CCMs中显著高表达(如BTBD10在CCMs中的表达量是对照的2.5倍,P<0.01),且与EC标志物共定位(共定位率>80%),显示较好的组织与细胞特异性;文献未提供ROC曲线的敏感性数据。

核心成果提炼

3个 hub 基因与CCMs发病机制密切相关:
- BTBD10与PFDN4:主要表达于EC(尤其是Mki67+尖端细胞),通过与M2巨噬细胞通讯(Ptn-Ncl通路)调控铜死亡,促进血管生成(与DLL4正相关,r=0.887,P<0.001)。
- CEMIP:主要表达于Cluster 2,与炎症通路(IL6/JAK/STAT3)相关,促进纤维化(与TGFB1正相关,r=0.75,P<0.001)。

创新性:首次在CCMs中鉴定出铜死亡相关Biomarker,解析了其与免疫浸润的相互作用机制。
统计学结果:BTBD10与VE-cadherin共定位率85%(n=4,P<0.01);Western blot显示BTBD10蛋白水平在CCMs中是对照的3.2倍(n=4,P<0.01);PFDN4与ENG(内皮迁移基因)负相关(r=-0.725,P<0.001)。

本研究为CCMs的诊断提供了新型Biomarker,为治疗提供了“铜死亡调控+免疫干预”的新策略,未来需进一步验证其临床转化价值。

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