Sperm capacitation and transcripts levels are altered by in vitro THC exposure

体外THC暴露会改变精子获能和转录水平。

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Abstract

BACKGROUND: Delta-9-tetrahydrocannabinol (THC) is the primary phytocannabinoid responsible for the psychoactive properties of cannabis and is known to interact with the endocannabinoid system, which is functionally present in the male reproductive system. Since cannabis consumption is the highest among reproductive aged males, the current study aimed to further investigate the effects of THC exposure to phenotypical, physiological, and molecular parameters in sperm. Bull sperm of known fertility were used as a translational model for human sperm and subjected to in vitro treatment with physiologically relevant experimental doses of THC. Sperm parameters, capacitation, apoptosis, and transcript levels were evaluated following treatment. RESULTS: Motility, morphology, and viability of bovine sperm was unaltered from THC exposure. However, 0.32µM of THC caused an increased proportion of capacitating sperm (p < 0.05) compared to control and vehicle group sperm. Transcriptome analysis revealed that 39 genes were found to be differentially expressed by 0.032µM THC exposure, 196 genes were differentially expressed by 0.32µM THC exposure, and 33 genes were differentially expressed by 3.2µM THC. Secondary analysis reveals pathways involving development, nucleosomes, ribosomes and translation, and cellular metabolism to be significantly enriched. CONCLUSION: Phytocannabinoid exposure to sperm may adversely affect sperm function by stimulating premature capacitation. These findings also show for the first time that spermatozoal transcripts may be altered by THC exposure. These results add to previous research demonstrating the molecular effects of cannabinoids on sperm and warrant further research into the effects of cannabis on male fertility.

文献解析

1. 领域背景与文献

文献英文标题:Delta-9-tetrahydrocannabinol induces premature capacitation and alters the sperm transcriptome in bovine sperm;发表期刊:未明确;影响因子:未公开;研究领域:男性生殖生物学(大麻素对精子功能的调控)。

全球范围内约有5000万夫妇受不孕不育困扰,且患者群体仍在持续扩大,其中男性因素直接导致20%的不孕不育病例,还在另外30%的病例中起到重要作用。除自然生物学因素外,环境与生活方式变量如肥胖、内分泌干扰物暴露、吸烟、药物及酒精使用等,在生育力研究中受到越来越多的关注。大麻是全球使用最广泛的娱乐性物质,仅2019年就有超过640万加拿大人和4820万美国人报告使用大麻,且男性使用比例高于女性,更倾向于使用高活性产品。近年来医用大麻的使用也显著增加,美国2016至2020年间医用大麻项目注册量增长超过4倍,大麻合法化的推进和社会接受度的提升,引发了其对生育力尤其是育龄男性生殖健康影响的担忧。

内源性大麻素系统(ECS)是由受体、酶和内源性大麻素配体组成的稳态调节系统,已被证实存在于男性和女性生殖系统中,其中功能性大麻素受体和内源性大麻素在调控精子运动、存活和获能方面发挥重要作用。Δ9-四氢大麻酚(THC)作为大麻的主要精神活性成分,可作为外源性大麻素部分激动剂激活大麻素受体1和2(CB1/2)。现有研究显示,大麻使用者存在精子浓度降低、形态异常、表观遗传改变等问题,体外实验也表明THC可抑制人类精子运动和顶体反应,但直接研究THC对精子生理功能及分子层面影响的研究仍有限,尤其是关于成熟精子转录组变化的研究几乎空白。由于人类精子使用存在伦理和技术限制,本研究选用与人类精子形态和生理特征相似的牛精子作为模型,旨在填补这一研究空白,明确THC对精子功能及转录组的影响,为大麻素对男性生殖健康的影响提供实验依据。

2. 文献综述解析

作者对领域内现有研究按临床观察研究、体外细胞实验、内源性大麻素系统基础研究三个维度进行分类评述,系统梳理了大麻素与男性生殖的研究进展,明确了现有研究的优势与局限性,凸显了本研究的创新价值。

现有临床观察研究的关键结论显示,大麻使用者的精子浓度普遍降低,更易出现精子形态异常,且精子表观遗传模式发生改变,甚至会影响后代的神经行为特征;部分研究还指出THC可能对精子发生过程产生负面影响。体外细胞实验的关键结论包括,内源性大麻素水平与男性生育力呈负相关,精浆中内源性大麻素水平降低与弱精子症、少弱畸精子症相关,THC可抑制人类精子的运动能力和顶体反应,激活大麻素受体对精子活性存在抑制作用。现有研究的技术方法优势在于,临床观察研究基于大样本真实暴露人群,能反映大麻使用对生殖健康的实际影响;体外细胞实验可严格控制变量,明确大麻素对精子的直接作用。但现有研究也存在明显局限性,临床研究易受混杂因素干扰,如使用者可能同时使用其他物质,难以单独归因于大麻;体外研究多聚焦于精子运动、存活等传统参数,对获能的影响结论存在分歧,且尚未涉及成熟精子转录组的研究,无法揭示大麻素作用的分子机制。

本研究的创新价值在于,首次采用与生理暴露水平相关的THC浓度处理成熟牛精子,同时评估精子运动、形态、存活、获能等多个生理参数,并首次开展THC对成熟精子转录组影响的研究,填补了大麻素对精子分子作用机制研究的空白。通过与现有研究对比,本研究不仅明确了THC对精子获能的调控作用,还揭示了其对精子转录组的影响,为大麻素对男性生殖健康的影响提供了新的功能和分子证据,具有重要的学术意义。

3. 研究思路总结与详细解析

本研究的整体研究目标是评估Δ9-四氢大麻酚(THC)对牛精子传统质量参数、生理功能及转录组的影响,核心科学问题是THC如何通过内源性大麻素系统调控精子功能,以及是否会改变成熟精子的转录组;技术路线遵循“样本制备→处理与分组→多参数功能评估→转录组分析→机制探索→结论总结”的闭环逻辑,实验设计严谨,覆盖了从表型到分子的多个层面。

3.1 牛精子样本制备与THC处理

实验目的是获得纯化的高活力牛精子,并进行不同浓度THC处理,模拟临床治疗和娱乐使用后的生理暴露水平。方法细节为,选用已知生育力的冷冻牛精子,通过不连续Percoll梯度离心法去除杂质和死精子,将洗涤后的精子分为五组,分别为对照组(HEPES/精子TALP培养基+0.3%牛血清白蛋白)、溶剂组(含0.01%乙醇的对照组培养基)、低THC组(0.032μM THC)、中THC组(0.32μM THC)、高THC组(3.2μM THC),各组精子在38.5℃、5%CO₂的培养条件下分别处理6小时或12小时。结果解读显示,通过梯度离心成功获得了纯化的精子样本,各组精子初始浓度和活力一致,为后续实验提供了标准化的研究材料。实验所用关键产品:Sigma Aldrich的培养基和化学试剂,Toronto Research Chemicals的Δ9-THC(Dronabinol),Semex的冷冻牛精子。

3.2 精子运动与形态学评估

实验目的是评估THC对牛精子传统质量参数(运动能力、形态)的影响,验证THC是否会影响精子的基本功能。方法细节为,在THC处理6小时和12小时后,离心重悬精子,形态学评估采用姬姆萨染色法,在Leica DMIRB显微镜下手动计数至少200个精子/组/重复,统计整体形态异常率及头部、颈部、尾部缺陷率;运动能力评估采用Makler计数池,通过EPView相机及软件录制视频,手动计数至少100个精子/组/重复,统计前向运动、非前向运动及非运动精子的比例,所有评估均采用盲法进行。结果解读显示,THC处理6小时和12小时后,各浓度组的精子运动参数(前向运动、非前向运动、非运动比例)与对照组、溶剂组相比均无显著差异(n=4,P>0.05);精子形态参数(整体异常率、头部/颈部/尾部缺陷率)也未出现显著变化(n=4,P>0.05),说明THC对成熟牛精子的运动能力和形态无显著影响。



实验所用关键产品:Sigma Aldrich的姬姆萨染色液,Leica DMIRB显微镜,Olympus Life Sciences的EPView相机及软件。

3.3 精子存活能力评估

实验目的是评估THC对牛精子存活及凋亡的影响,明确THC是否会诱导精子凋亡。方法细节为,在THC处理6小时和12小时后,采用Annexin V-FITC/碘化丙啶(PI)染色法,通过BD C6 Accuri流式细胞仪分析精子存活状态,设置二硫苏糖醇(DTT)处理组为凋亡阳性对照,每组样本收集至少25000个事件,将精子分为活精子(Annexin V-FITC-/PI-)、早期凋亡精子(Annexin V-FITC+/PI-)、晚期凋亡精子(Annexin V-FITC+/PI+)、坏死精子(Annexin V-FITC-/PI+)四类。结果解读显示,THC处理6小时和12小时后,各浓度组的活精子、早期凋亡精子、晚期凋亡精子及坏死精子比例与对照组、溶剂组相比均无显著差异(n=4,P>0.05);而阳性对照组DTT处理后,活精子比例显著降低,晚期凋亡精子比例显著升高(n=4,P<0.05),说明THC对成熟牛精子的存活能力无显著影响。


实验所用关键产品:Abcam的Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒,BD Biosciences的BD C6 Accuri流式细胞仪及FlowJo v10软件。

3.4 精子获能状态评估

实验目的是评估THC对牛精子获能的影响,探索THC对精子受精能力的潜在作用。方法细节为,在THC处理6小时后,采用Merocyanine-540(M540)/Yo-Pro-1(YP1)染色法,通过流式细胞仪分析精子获能状态,设置肝素处理组为获能阳性对照,每组样本收集至少25000个事件,将精子分为活非获能精子(M540-/YP1-)、凋亡精子(YP1+)、活获能精子(M540+/YP1-)三类。结果解读显示,中THC组(0.32μM)的活获能精子比例显著高于对照组和溶剂组(n=4,P<0.05),而低THC组和高THC组的活获能精子比例与对照组相比无显著差异;各组凋亡精子比例也未出现显著变化,说明中浓度THC可诱导牛精子提前发生获能。


实验所用关键产品:Sigma Aldrich的Merocyanine-540、Yo-Pro-1,BD Biosciences的BD C6 Accuri流式细胞仪及FlowJo v10软件。

3.5 精子转录组分析

实验目的是从分子层面探索THC对牛精子的作用机制,明确THC是否会改变成熟精子的转录组。方法细节为,在THC处理6小时后,提取两组生物学重复的总RNA,其中一组为单头牛的精子RNA,另一组为三头牛的精子RNA混合样本以降低个体差异,采用GeneChip Bovine Gene 1.0 ST微阵列进行转录组分析,差异表达基因(DEG)定义为表达倍数变化(fold change)>±2且P<0.05,随后使用DAVID 6.8在线工具进行基因本体(GO)富集分析。结果解读显示,溶剂组与对照组之间存在100个差异表达基因,排除这些基因后,低THC组与溶剂组相比有39个差异表达基因,中THC组有196个差异表达基因,高THC组有33个差异表达基因;三组THC处理共有的下调基因为ANKRD31、B9D1、ROPN1L。GO富集分析结果显示,低THC组的差异表达基因富集于核小体组装、核糖体、氧化磷酸化、子宫内发育等通路;中THC组富集于核小体、多细胞生物发育、糖酵解/糖异生、细胞周期等通路;高THC组富集于核糖体/翻译、泛素样蛋白结合等通路,说明THC可通过改变精子转录组影响多个生物学过程。


实验所用关键产品:Qiagen的miRNeasy Micro RNA提取试剂盒,Thermo Fisher Scientific的GeneChip Bovine Gene 1.0 ST微阵列及Transcriptome Analysis Console软件,DAVID 6.8在线分析工具。

4. Biomarker研究及发现成果

本研究中涉及的Biomarker包括THC处理后牛精子中差异表达的转录本,以及反映精子获能状态的表型标志物(活获能精子比例),通过多组学分析与功能验证相结合的方式,明确了这些Biomarker的特征与潜在功能。

Biomarker定位方面,差异表达转录本作为分子Biomarker,其筛选逻辑为:通过转录组微阵列筛选THC处理组与溶剂组之间的差异表达基因,排除对照组与溶剂组的差异基因后,获得THC特异性调控的基因;表型Biomarker(活获能精子比例)的验证逻辑为:通过流式细胞术M540/YP1染色,检测精子膜紊乱程度(获能的标志)与凋亡状态,明确THC对精子获能的调控作用。

研究过程详述显示,分子Biomarker来自THC处理6小时后的牛精子样本,包含两组生物学重复以保证结果可靠性,其中低THC组有39个差异表达基因,中THC组有196个,高THC组有33个,三组共有的下调基因为ANKRD31、B9D1、ROPN1L;GO富集分析进一步揭示了这些基因参与的生物学通路,包括发育、代谢、翻译等多个过程。表型Biomarker的验证采用流式细胞术,中THC组的活获能精子比例显著高于对照组和溶剂组(n=4,P<0.05),而低THC组和高THC组无显著变化,说明中浓度THC是诱导精子提前获能的关键暴露水平。

核心成果提炼方面,本研究首次发现THC可改变成熟精子的转录组,其中ANKRD31、B9D1、ROPN1L为不同浓度THC处理共有的下调基因,这些基因可能参与精子功能的调控;同时首次明确中浓度THC可诱导牛精子提前获能,而提前获能可能导致精子ATP提前耗尽,无法到达卵子完成受精,进而影响生育力。这些Biomarker的发现为大麻素对男性生殖健康的影响提供了新的分子和功能证据,为后续开展大麻使用与男性不育的临床研究提供了潜在的检测指标,具有重要的转化应用价值。由于研究未提供差异表达基因的具体功能验证数据,推测这些转录本的变化可能通过影响精子的能量代谢、发育相关过程调控精子功能,需进一步实验验证。

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