ELISA 用到 1/80000
山羊抗兔 HRP,WB 1/2000 起

板子显色,空白孔也发黄。洗了五遍还是这样,底物换了一瓶新的也没用。
查配液记录,二抗按 WB 的 1/2000 加的。ELISA 那一栏写的是 1/20000 到 1/80000。
差了十倍到四十倍。HRP 二抗在板子上过量,洗不掉的酶直接跟底物反应,空白孔就黄了。
HRP 为什么省着用
HRP 是酶标,一个分子能催化很多底物分子,信号是放大的。用量不需要像荧光二抗那样堆。
过量之后,酶粘在板壁和封闭蛋白上,洗涤只能去掉一部分,剩下的持续催化,本底越来越高。
ELISA 的读数窗口本来就窄,本底一抬,低浓度样本的差值全被压平。
ELISA 的窗口比 WB 窄得多。WB 过曝还能靠压曝光救,板子读出来顶格就没办法了,只能重做。
这支的事实
山羊抗兔 IgG,H&L 全片段,多抗,带 HRP 标记。做过吸附处理。
吸附这一步是把跟其他物种 IgG 交叉反应的部分去掉。做多物种样本、或者样本里混有内源免疫球蛋白时,这一步能降背景。
应用列了五项,WB、IHC、ELISA、IF/ICC、Dot blot。一支二抗覆盖五个场景。
稀释给的是 WB 1/2000 到 1/10000,ELISA 1/20000 到 1/80000。两个应用差着一个数量级。
H&L 全片段的好处是能配完整 IgG 和片段化抗体,做 Fab 二抗时不用另买。
两个稀释差一个数量级
WB 上蛋白转在膜上,抗体要渗进膜的空隙,浓度低了结合不上,所以从 1/2000 起。
ELISA 里抗原包在板底,是平面,抗体扩散容易,加上酶放大,浓度可以压得很低。
用错的那一端,WB 会没信号,ELISA 会满板黄。这两个错法表现完全相反,判断时容易往抗体质量上想。
如果板子信号整体偏低,先查包被和一抗,不要直接加二抗浓度。加浓容易把本底一起抬起来。
三条操作建议
ELISA 从 1/40000 起,1/20000 留给信号弱的板子。配好之后先跑一条标准曲线,看最高点和最低点的差值。
WB 用 1/5000 做常规,1/2000 留给表达量低的样本。别一上来就用最浓的那端。
底物现配现用。TMB 放久了自身会变蓝,跟抗体没关系。
封闭用 5% 脱脂奶粉,板子封闭一小时以上。封闭不充分,二抗会粘在没被覆盖的塑料上。
读板前把板底擦干净。指纹和气泡在 450 nm 上的影响比想象中大。
下次配二抗,把 WB 和 ELISA 两个稀释比分别写在两个管子上,别用同一管来回兑。
关键参数
| 反应种属 | Rabbit |
| 抗原名称 | Rabbit IgG |
| 验证应用 | WB, IHC, ELISA, IF/ICC, Dot |
| 偶联标记 | HRP |
| 宿主/亚型 | Goat / IgG |
| 抗体类型 | Polyclonal |
| 纯化方式 | Affinity purification |
| 推荐稀释 | WB 1/2000 - 1/10000;ELISA 1/20000 - 1/80000 |
| 储存条件 | 短期 +4°C;长期 +4°C |
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