TGF-β1 的条带跑在两个位置

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TGF-β1 的条带跑在两个位置

兔单抗,人鼠三个种属,WB 与 IHC-P 双验证

Abcam  ·  货号 Ab215715

TGF-β1 的条带跑在两个位置

做肾纤维化模型,同一块胶上,TGF-β1 的条带出现在 12.5 kDa 和 25 kDa 两个位置。

学生以为低的那条是降解,一路加大上样量,两条一起变粗。

其实还原剂决定了你看到哪一个:单体 12.5 kDa,二聚体 25 kDa,样本里两种形式同时存在。

另外还有潜伏复合物,分子量在七十几 kDa 以上,跑不进 12% 的胶。

如果只关心成熟形式的分泌量,用 15% 的胶把低分子量区域拉开,比在高浓度胶里找潜伏复合物省事得多。

Western blot 验证结果
图 1 Western blot 验证结果(图源:Abcam 官网产品页)

条带位置取决于还原条件

加 DTT 或 β-巯基乙醇并煮沸,二硫键断开,主要看到 12.5 kDa 的单体带。

不加还原剂,二聚体保留,25 kDa 那条占主导。

两种条件都能用,关键是同一批样本前后统一,否则组间没法比。

还原与非还原的样本不要共用同一套分子量标准去推大小,二聚体的位置正好压在内参附近,读错了会以为上样不齐。

从细胞裂解液直接跑,常能看到高分子量的潜伏形式,那不是杂带,是 TGF-β1 还没被释放出来。

这支的事实

兔单抗,克隆号 EPR21143,IgG,无标记,Protein A 亲和纯化。

种属写了人、小鼠、大鼠三个,应用列 WB 和 IHC-P 两项,没有流式也没有 IP。

产品页提到特异性在 TGFB1 敲除的 A549 细胞里做过 WB 验证,这比条带位置是更硬的证据。

敲除验证对分泌蛋白尤其重要,血清和培养基里本身就带 TGF-β1,批次一换背景就变。

缓冲液是 PBS 加 40% 甘油和 0.05% BSA,pH 7.2 到 7.4,含 0.01% 叠氮钠,收到后避免反复冻融。

免疫原信息产品页写的是专有信息,没有公开具体肽段。

IHC 上胞外基质也会亮

TGF-β1 是分泌蛋白,切片上信号不集中在细胞里,基质和细胞间质也会染色。

判断特异性别只看某一群细胞亮不亮,要看整体分布是否符合预期,再加一张阴性组织对照。

石蜡切片修复用柠檬酸还是 EDTA,产品页没有给,先按实验室常规走,两种各试一次就有数。

抗体稀释比同样没有给,从 1/1000 起试,按信噪比往上或往下调。

三条操作建议

上样量按总蛋白定量,还原与非还原各跑一块胶,别在同一块里比对。

封闭用 5% 脱脂奶粉,TGF-β1 不是磷酸化抗体,奶粉不影响。

显影时间别拉太长,12.5 kDa 附近容易过曝,一过曝就看不出组间差异。

下次把同一份样本分还原与非还原两管,各上 20 µg,并排跑一次。

关键参数

反应种属 Human, Mouse, Rat
抗原名称 TGFB1
验证应用 WB, IHC
宿主/亚型 Rabbit / IgG
抗体类型 Monoclonal
纯化方式 Affinity purification Protein A
储存条件 短期 +4°C;长期 -20°C
Western blot 验证结果
图 2 Western blot 验证结果(图源:Abcam 官网产品页)

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